TBNK检测：细胞治疗的精准免疫检测利器

随着细胞治疗逐步从实验室迈向临床，免疫系统的精准调控已成为决定疗效的关键因素。其中，TBNK淋巴细胞亚群作为免疫系统的核心力量，其数量和功能的动态监测被视为细胞治疗全程的“风向标”。为了更高效、更精准地监测免疫平衡，ACROBiosystems推出了Human TBNK 6-Color Cocktail Flow Panel（Cat. No. ICA-A001），可快速完成TBNK检测，为细胞治疗的研发和临床应用提供可靠的技术支持。

TBNK并非单一细胞群体，而是由 T 细胞、B 细胞和 NK 细胞组成的“免疫军团”，它们协同构筑机体抵御疾病的核心防线。

> T 细胞（CD3⁺）：作为免疫系统的 “指挥官”，分为辅助性 T 细胞（CD3⁺CD4⁺）和细胞毒性 T 细胞（CD3⁺CD8⁺）。前者激活免疫反应，后者直接清除异常细胞，二者的平衡（CD4/CD8 比值）是免疫功能正常的核心指标。

> B 细胞（CD3⁻CD19⁺）：被称为“抗体工厂”，负责产生特异性抗体，是体液免疫中不可或缺的组成部分，其数量变化与感染风险直接相关。

> NK 细胞（CD3⁻CD16⁺CD56⁺）：天然免疫的“快速反应部队”，无需抗原激活即可直接杀伤肿瘤细胞或病毒感染细胞，是天然免疫的第一道防线。

在健康人体内，这些细胞比例保持着精妙平衡。细胞治疗的核心任务，正是通过调控这些细胞的数量与活性，重建或增强机体的抗癌、抗病毒能力。

🗝️ 治疗前：精准筛选最佳候选者

细胞治疗患者的免疫基线直接影响细胞治疗疗效。以CAR-T为例，若 T 细胞数量过低或功能受损，将直接影响扩增和治疗结果。TBNK 检测可通过流式细胞术快速量化 T、B、NK细胞数量及比例，有助于判断患者是否适合接受细胞治疗。例如，晚期肿瘤患者常出现 T 细胞耗竭（CD4⁺T 细胞减少、CD8⁺T 细胞异常升高），需先通过免疫调节剂改善免疫状态；NK 细胞活性低下的患者，可能更适合联合 NK 细胞疗法。

🗝️ 治疗中：动态风险监测

细胞治疗过程中，免疫系统的“火候”至关重要。过度激活可能引发细胞因子风暴，若活性不足，则难以有效清除病灶。TBNK检测能够动态追踪免疫细胞变化，为及时调整方案提供依据。例如，若CD4⁺T细胞持续下降，提示可能存在免疫抑制风险，需要暂停治疗或联用IL-2等细胞因子辅助治疗；若NK细胞比例骤升，则可能预示出现治疗相关的不良反应，应及时干预以降低毒性反应风险。

🗝️ 治疗后：评估疗效与复发风险

在治疗结束后，TBNK检测依然是细胞治疗疗效评估与长期随访的重要工具，也是疗效评估的“金标准”之一。CD3⁺T细胞比例回升、CD4⁺/CD8⁺比值恢复正常，往往提示免疫功能重建成功；B细胞数量持续偏低则提示感染风险增加，需补充免疫球蛋白以预防并发症；而NK细胞活性保持高位的患者，通常具有更低的肿瘤复发率。由此，TBNK检测贯穿细胞治疗全过程，为疗效评估和风险控制提供持续保障。

精准的TBNK检测离不开可靠的检测工具。ACROBiosystems 的Human TBNK 6-Color Cocktail Flow Panel可以一次性快速可靠地检测T细胞、B细胞和NK细胞群，让您免于配色、多次加样和抗体滴度验证的烦恼，为您的药物开发、免疫监测等研究提供高质量、高效率的免疫细胞分型分析工具！

核心优势

✨ 六色同步检测：试剂盒预混7种荧光标记抗体，可一次性完成对 T 细胞亚群、B 细胞和 NK 细胞的分型与比例分析，减少了样本用量，避免多次染色带来的误差，确保数据一致性。

✨ 15 分钟快速染色：通过优化抗体配方，将反应时间缩短至 15 分钟，开封后在 2–8℃储存条件下可稳定使用 30 天，适合高通量检测场景。

✨ 多重验证保障：通过同型对照（Isotype Control）、荧光减一对照（FMO Control）和阴性细胞对照（如 293T、Hela 细胞）等多重验证，特异性达 99% 以上。不同仪器和不同操作人员结果高度一致，T细胞比例CV值（变异系数）＜1.5%。

✨ 标准化gating策略：采用严谨的细胞门控逻辑，先通过 FSC/SSC 圈定总淋巴细胞，再利用 DAPI 排除死细胞，基于 CD45⁺标记筛选淋巴细胞，最终通过特异性标志物细分细胞亚群。这种分层策略有效避免了红细胞、血小板等杂质的干扰，各细胞亚群比例检测CV值低于5%，远超行业平均水平。

✨ 广泛适配性：支持全血和PBMC等多种样本类型，兼容BD、Beckman、Thermo 等主流流式细胞仪，提供 96 孔板和流式管两种检测模式，满足自动化平台的高通量需求，大幅降低人力成本。

✨ 选择灵活：可灵活选择荧光抗体或试剂盒分析不同细胞；

✏️ Panel性能验证（Cat. No. ICA-A001）

Start by setting the CD45/SSC scatter plot to identify the CD45+ lymphocyte population (A). Within the CD45+ gate, use the CD3/SSC scatter plot to identify the CD3+ T cell population (B). Next, use the CD3/CD4 scatter plot to identify the CD3+CD4+ helper T cells (Th gate) (C), and the CD3/CD8 scatter plot to identify the CD3+CD8+ cytotoxic T cells (Tc gate) (D). For B cells, use the CD3/CD19 scatter plot to identify the CD3-CD19+ population (B gate) (E). Finally, set the CD3/CD16+CD56 scatter plot to assess the CD3-CD56+CD16+ NK cell population (F).

✏️ 荧光抗体性能验证

Flow cytometric analysis of Jurkat staining with PE-Labeled Monoclonal Anti-Human CD45 Antibody, Mouse IgG2a (Cat. No. FABm007-01) at 1:20 dilution (5 μL of the antibody stock solution corresponds to labeling of 1e6 cells in a final volume of 100 µL), compared with isotype control antibody. PE signal was used to evaluate the binding activity (QC tested).

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（注：产品仅供科研使用，不用于诊断或治疗程序。）